304am永利集团(官方vip认证)网站-GREEN NO.1

图像捕获

样品制备

木材细胞分析通常通过显微镜用薄片切片机产生的木材样品切片来进行， 有时通过染色来提高内腔的对比度；在适当的准备和照明下，大的导管可从木材表面进行直接分析。

显微镜

为了获取显微镜用薄片切片机产生的木材样品切片的图像， 需要有带有可以安装相机的附件插管和 C-安放适配器（由显微镜制造商提供）的显微镜。

相机

可选择 5MP（百万像素）的相机，直接安装在木片上方（带有光学透镜）。也可以从光学扫描仪获取图像（选购前请查询条件）来分析大细胞（导管） 。

从 WinCELL 获取的图像

调整好显微镜或样品位置后，通过软件操作显示图像， 设置图像参数（尺寸、色彩、过滤器），分析图像数据。

分析原理

使用时通过 CCD 把采集到的木材薄片显微影像输入计算机进行分析，图像的观测和分析都在同一屏幕上完成，图像可即时分析，也可批量分析。

解剖学树木细胞分析可用X射线进行树木密度分析（例如 WinDENDRO）。木材密度、色彩、机械和化学性质都受到树木树轮结构的影响，而该结构又与环境气候有关。通过测量辐射细胞（管胞）的尺寸、分布以及到内壁的比例，木材的质量可以评估出来。

软件特点

1）WinCELL 使用分析区域的概念是为了摒弃不完整的细胞。接近图像边缘或在分析区域以外的细胞在进行细胞平均测量计算（面积、长度和宽度）时可以不予考虑。颜色可以用于细胞指 示其分级：被图像边缘切割、部分或完全在分析区域内外、操作者遗弃、碎片、细胞类型（细胞、导管或薄壁组织）。

2）在测量期间测量数据是交互式的，文本格式的文件可以被许多程序软件读取。这些文件可以很容易地被诸如 Microsoft Excel 的电子表格程序打开。用户也可以点击一个细胞来显示其形态学测量数据。细胞分布的柱状图可以在分析期间或在 XLCell 程序处理后看到，它也可以表现细胞结构参数的整体观；在专业版软件中，柱状图还可以显示颜色分析结果。

3）图像编辑可以补偿缺陷或差对比度，图像可以用任何颜色编辑。可以容易地选择图像中表现的颜色并用它编辑。通常可以使用工具笔（用来画线）和工具索套（用来确定区域轮廓）进行编辑。

5）还可以把细胞组合分析，如导管的四个部分合成一个分析对象处理。

6）WinCELL 可以分析灰度或彩色图像（我们的相机这两种图像都可以产生）。专业版在彩色图像上可以做更多的分析。 它可以显示和分析彩色图像的三中色彩通道之一，使用色彩来更好地在内腔和外壁或色彩量化区域对像素进行分类。

7）内建校验程序并可很容易地用显微镜厂商的目标来执行，支持不同的目标模式。

8）碎片可以自动地由尺寸过滤，或通过编辑图像手动处理。

9）由 WinCELL 获取的原始图像，无论是否经过分析，都可以存储成标准的 tiff 或 bmp 文件，这些文件可用于其它应用程序（MS Word，Photoshop 等）。

10）批处理可以分析一系列图像而无须操作人员监督。  这中分析方式仅能以自动模式进行（非交互式）。

11）可以在配置文件中存储分析设置，在后续操作或重复操作中使用。

12）用户可以选择存储哪些数据。

13）WinCELL 也可以做为通常的面积仪使用 （例如测量叶面积），  更改一些默认设置后， 也可以作为其它物体的形态学分析设备来使用。

14）当购买 WinDENDRO 系统时，WinCELL 标准版软件是免费附赠的。

测量参数

个体测量参数：个体木细胞的长度、宽度、面积、位置、细胞壁厚度等。

总体测量参数：总木细胞和脉管面积、总细胞壁面积、木细胞和脉管总数量、平均木细胞和脉管长度、宽度和面积，颜色分析。

应用领域

广泛应用于植物学，植物生理学，林学、树木学等研究领域。  

主要技术参数

木细胞图像分析模块

标准版 WinCELL 木细胞分析软件

分析木细胞、脉管面积、总细胞壁面积、木细胞和脉管总数量、平均木细胞和脉管长度、宽度和面积。

分析个体木细胞的长度、宽度、面积、位置、细胞壁厚度等。

专业版 WinCELL 木细胞分析软件（含 2.1.1 至 2.1.2）

颜色分析

图像获取设备：彩色 USB 2.0 相机，分辨率 5 百万像素，2 米连接缆线

选购指南：

WinCELL 系统包括

·   带有彩色说明书的标准版或专业版 WinCELL 软件

·   彩色 USB 2.0 相机，分辨率 5 百万像素，2 米连接缆线

·   数据分析和可视化 XLCell 伴侣软件（可选）

系统不包括: 相机用 C-安放适配器，这些适配器应该由显微镜厂商提供； 相机镜头（在显微镜上的相机无须镜头，但不使用显微镜而做其它应用时需要镜头）

产地：加拿大 Regent

参考文献

原始数据来源：Google Scholar

Bulens, I., et al., Dynamic changes of the ethylene biosynthesis in ‘Jonagold’ apple. Physiologia Plantarum, 2014. 150(2): p. 161-173.

Centeno, R., et al., Three mirror of axis integrated cavity output spectroscopy for the detection of ethylene using a quantum cascade laser. Sensors and Actuators B: Chemical, 2014. 203: p. 311-319.

Chmielewska-Bak, J., et al., Effect of cobalt chloride on soybean seedlings subjected to cadmium stress. Acta Societatis Botanicorum Poloniae, 2014. 83(3).

Hoogstrate, S.W., et al., Tomato ACS4 is necessary for timely start of and progression through the climacteric phase of fruit ripening. Frontiers in Plant Science, 2014. 5: p. 466.

Keshavarzi, M., et al., Ethephon and secondary shoot induction in Gentian (Gentiana spp.) hybrids in vitro. Scientia Horticulturae, 2014. 179: p. 170-173.

Martin Schäfer, et al., Cytokinin concentrations and CHASE-DOMAIN CONTAINING HIS KINASE 2 (NaCHK2)- and NaCHK3-mediated perception modulate herbivory-induced defense signaling and defenses in Nicotiana attenuata. The New phytologist, 2015. 207(3): p. 645-658.

Razzaq, K., et al., Role of 1-MCP in regulating 'Kensington Pride' mango fruit softening and ripening. Plant Growth Regulation, 2015: p. 1-11.

Rupavatharam, S., A.R. East, and J.A. Heyes, Re-evaluation of harvest timing in ‘Unique’ feijoa using 1-MCP and exogenous ethylene treatments. Postharvest Biology and Technology, 2015. 99: p. 152-159.

Santhanam, R., et al., Analysis of Plant-Bacteria Interactions in Their Native Habitat: Bacterial Communities Associated with Wild Tobacco Are Independent of Endogenous Jasmonic Acid Levels and Developmental Stages. PLoS ONE, 2014. 9(4): p. e94710.

Schellingen, K., et al., Cadmium-induced ethylene production and responses in Arabidopsis thaliana rely on ACS2 and ACS6 gene expression. BMC Plant Biology, 2014. 14(1): p. 1-14.

Wilson, R.L., A. Bakshi, and B.M. Binder, Loss of the ETR1 ethylene receptor reduces the inhibitory effect of far-red light and darkness on seed germination of Arabidopsis thaliana. Frontiers in Plant Science, 2014. 5: p. Article 433(1-13).

Wilson, R.L., et al., The Ethylene Receptors ETHYLENE RESPONSE1 and ETHYLENE RESPONSE2 Have Contrasting Roles in Seed Germination of Arabidopsis during Salt Stress. Plant Physiology, 2014. 165(1532-2548 (Electronic)): p. 1353–1366.

Xu, A., W. Zhang, and C.-K. Wen, ENHANCING CTR1-10 ETHYLENE RESPONSE2 is a novel allele involved in CONSTITUTIVE TRIPLE-RESPONSE1-mediated ethylene receptor signaling in Arabidopsis. BMC Plant Biology, 2014. 14: p. 48-48.

Zahoor Hussain, Z.S., Involvement of ethylene in causation of creasing in sweet orange [Citrus sinensis (L.) Osbeck] fruit. Australian Journal of Crop Science, 2015. 9(1): p. 1-8.

A. Rodríguez-García, et al. (2016). "Effect of four tapping methods on anatomical traits and resin yield in Maritime pine (Pinus pinaster Ait.)." Industrial Crops and Products 86: 143-154.

 D. Wrońska-Wałach, et al. (2016). "Quantitative analysis of ring growth in spruce roots and its application towards a more precise dating." Dendrochronologia 38: 61-71.

A. Rodríguez-García, et al. (2015). "Influence of climate variables on resin yield and secretory structures in tapped Pinus pinaster Ait. in central Spain." Agricultural and Forest Meteorology 202: 83-93.